動物體內生物分布實驗案例告訴你，如何避免這些誤區

最新 05-26

一、實驗目的

1. 學習小鼠的抓取固定方法、尾靜脈注射、小鼠的處死及小鼠的間剖實驗等基本技能。

2. 學會動物分布實驗的數據處理。

二、實驗原理

1、小鼠品種選擇：

小鼠的品種和品系很多，是實驗動物中培育品系最多的動物。在微生物和各種實驗研究中，以小白鼠最為普遍，有英國種、法國種、德國種和瑞士種等，而以瑞士種最著名。目前我國各生物製品、醫學研究單位繁育的小白鼠為昆明種，該品係為封閉種群，最早在抗日戰爭時期從緬甸而來，在雲南昆明繁殖，經過多年培育繁殖而成，該品系小鼠體型較大，繁殖力強。

2、小鼠尾靜脈注射練習：

靜脈注射時，用小鼠尾靜脈注射架固定，先根據動物大小選擇好合適的固定架，並打開鼠筒蓋，手提鼠尾巴，讓動物頭對準鼠筒口並送入筒內，調節鼠筒長短合適後，露出尾巴，固定筒蓋即可進行尾靜脈注射或尾靜脈采血等操作。

尾靜脈注射時，鼠尾靜脈在背側和腹側各一根，背側比較容易固定，多採用。操作時先將動物固定在鼠筒內或扣在燒杯中，使尾巴露出，尾部用45～50℃的溫水浸潤半分鐘或用酒精擦拭使血管擴張（也可用一米距離外紅外燈烤半小時），並可使表皮角質軟化，以左手拇指和食指捏住鼠尾兩側，使靜脈充盈，用中指從下面托起尾巴，以無名指和小指夾住尾巴的末梢，右手持注射器連4(1/2)號細針頭，使針頭與靜脈平行（小於30℃），從尾下四分之一處（約距尾尖2-3厘米）處進針，此處皮薄易於刺入，先緩注少量藥液，如無阻力，表示針頭已進入靜脈，可繼續注入。注射完畢後把尾部向注射側彎曲以止血。如需反覆注射，應儘可能從末端開始，以後向尾根部方向移動注射。

三、實驗儀器與試劑

主要儀器：放射性活度計, FW-2000鍀分析儀，天平，1 ml一次性注射器，解剖工具，毛細管，聚醯胺薄片，燒杯等。

主要試劑：Na99mTcO4淋洗液，生理鹽水，乙腈，MDP藥盒等。

四、實驗步驟

將2ml生理鹽水注入MIBI藥盒，振蕩使充分溶解。加入0.3ml約1.1mCi新鮮淋洗的99mTcO4-溶液，振蕩使混合均勻，室溫靜置15min。以生理鹽水-聚醯胺薄膜體系檢測標記率。用生理鹽水將藥物99mTc-MIBI稀釋至約200μCi/ml。取6隻約18-20g的昆明小白鼠，尾靜脈注射0.1ml(約25μCi)的99m Tc-MIBI（放射化學純度大於90%），分別在注射後5、30、和60 min將小鼠斷頭處死，取出心、肝、肺和血等組織，稱重並用鍀分析儀測其放射性計數，計算每克組織的放射性攝取率XID/g=[(A組織/A注)×100%]/m組織

五、實驗結果

本次實驗，由於操作不熟練，無法及時有效的完成實驗內容，因而我們沒有得到實驗有效數據，只是進行了抓取固定方法、小鼠靜脈注射、處死及解剖的練習。

六、問題討論

1. 在做動物體內生物分布實驗時需要特別注意哪些事項？

答：需要注意的事項有：

1）注射時應排盡注射器內的氣泡；

2）如需反覆注射，應儘可能從末端開始，以後向尾根部方向移動注射；

3）注射完畢後，應先用棉花堵住傷口，再拔針，以免藥液漏出；

4）取血時，應避免取到尿液。取一次血，換一個滴管；

5）血液應儘快稱重，以免其揮發後引入誤差；

6）解剖完一個器官後或組織後，應擦拭鑷子等器具，以防止上面的殘留物影響其他數據。

關於動物實驗還有很多問題需要解答，怎麼辦？